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iMSC——细胞治疗领域的下一个关键突破口

细胞治疗
04/28
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近年来,再生医学逐渐成为全球生物医药领域的研究热点。其中,基于干细胞的治疗策略因其靶向性强、副作用低、修复能力卓越而广受关注。在众多干细胞类型中,间充质干细胞(MSC)由于其强大的免疫调节和组织修复能力,早已被广泛应用于多种疾病的治疗。然而,传统来源的MSC也面临着获取困难、增殖能力下降、异质性高等挑战。为此,源自诱导多能干细胞(iPSC)的iMSC应运而生,并迅速成为细胞治疗领域的一匹“黑马”。

MSC简史与作用机制 

从发现到信号细胞

Arnold Caplan教授于1991年在《Journal of Orthopaedic Research》杂志上发表了题为 “Mesenchymal stem cells” 的文章,正式提出了 “间充质干细胞” 这一术语,其最初发现于骨髓中。此后,科学家们相继在脂肪组织、脐带、胎盘、牙髓等组织中分离到MSC。这些细胞具有多向分化潜能,是成人体内维持组织稳态与修复的重要细胞群体。然而,近年来的研究表明,MSC的治疗作用并非依赖于其“干性”,而是通过旁分泌效应发挥关键功能。MSC能分泌大量抗炎、促进血管生成和组织修复的活性因子,调节局部免疫微环境。因此,Caplan教授于2017年提出应将MSC重新定义为“药用信号细胞”(Medicinal Signaling Cells”)。

iMSC为何脱颖而出?

 原代MSC的局限与突破口

尽管MSC在再生医学中展现出巨大潜力,但原代MSC的获取和应用仍存在显著瓶颈:数量有限;增殖能力下降;异质性强;伦理与可控性问题。

相较之下,iPSC来源的MSC(iMSC)拥有原代MSC所不具备的多项优势:

 来源稳定:可从少量体细胞(如皮肤成纤维细胞)诱导获得,突破组织限制,无伦理问题
 可无限扩增:iPSC具有高度增殖潜能,可持续提供一致性良好的细胞原料
 同质性高:标准化分化流程减少批间差异,便于建立GMP级别制备体系
 容易基因修饰:具备更高的遗传工程可操作性,为开发药效更强的MSC疗法奠定基础

这些特性使iMSC成为突破MSC治疗局限的关键,也正在逐步走入临床转化的快车道。

多线并进 

 iMSC在再生医学领域的应用实


iMSC的应用十分广泛,在再生医学、个性化治疗、免疫调节、血管生成以及其他人类疾病的治疗等方面都发挥着重要作用。

随着研究不断深入,iMSC正逐步显现出广谱的再生治疗潜力。从已经进入临床阶段的膝骨关节炎、间质性肺病和aGvHD,到尚处于前临床验证阶段的肾病、卵巢功能维持和心肌病,iMSC不仅为现有治疗难题提供新解法,也为未来疾病干预方式的拓展打开了想象空间。

膝骨关节炎

膝骨关节炎(KOA)是老龄化社会的高发疾病,传统治疗手段难以逆转软骨退变。MSC具有抗炎、促进软骨再生的能力,而iMSC继承了这一特性,为膝骨关节炎的治疗带来了新的希望,有望突破传统疗法的局限,推动膝骨关节炎治疗向根本性修复方向发展。

国际方面,Cynata Therapeutics布局的CYP-004项目正处于III期临床试验,是目前全球iPSC来源细胞疗法中在KOA领域进展最为迅速的管线之一。

国内方面,中盛溯源开发的iPSC来源MSC产品NCR100,是我国首个获批临床的iPSC来源细胞治疗产品,用于KOA治疗,目前已推进至临床II期

间质性肺病

间质性肺病(ILD)是一类严重的肺部纤维化疾病,病程进展快,现有药物多难以有效阻断其病理进展。研究表明,iMSC可在肺组织中通过分泌抗炎因子、调节免疫反应、抑制纤维化信号通路,从而发挥保护作用。

在临床进展方面,中盛溯源开发的“NCR101”是全球首个获批临床的iPSC来源基因修饰MSC细胞产品,目前已进入I/II期临床,专注于治疗间质性肺病,为该类难治性肺部疾病提供了全新的细胞治疗路径。

急性移植物抗宿主病

急性移植物抗宿主病(aGvHD)是异基因造血干细胞移植后的严重免疫并发症,尤其在激素难治性(SR-aGvHD)患者中,传统免疫抑制治疗疗效有限,临床迫切需要更安全有效的治疗方案。iMSC具备良好的免疫调节能力与细胞产品一致性,正逐步成为该领域的关键突破口。

国际方面,Cynata Therapeutics开发的CYP-001是全球首个进入I期临床的iMSC产品,用于治疗SR-aGvHD。临床数据显示,在15名接受治疗的患者中,100天时的总体缓解率为86.7%,完全缓解率为53%,且未出现严重不良反应。两年随访数据显示,患者的总体生存率为60%,显著优于历史数据中标准治疗的20%。目前该项目已进入II期临床阶段,并被FDA授予孤儿药资格。

国内方面,中盛溯源也已布局aGvHD相关治疗管线,所开发的iMSC产品于2025年获批获批临床默示许可,是国内首款用于SR-aGvHD治疗的iPSC来源MSC产品,目前处于I/II临床试验阶段。

肾病

 慢性肾脏病(CKD)是一种由肾纤维化逐步进展引起的肾功能持续丧失性疾病,全球患病率高,且缺乏有效逆转病程的治疗方式。研究表明,iMSC可通过SIRT6/β-连环蛋白信号通路抑制肾纤维化、减轻炎症反应、改善肾功能,保护肾脏免受CDK实质损伤和缺血再灌注损伤,为肾病治疗提供新思路。

 终末期肾病(ESKD)的患者肾功能几乎完全丧失,需依赖透析或肾移植维持生命。肾移植虽能显著改善患者生活质量,但术后需长期使用免疫抑制剂以防止排斥反应,这些药物可能引发严重副作用。因此,开发既能有效预防排斥反应又能减少免疫抑制剂使用的新疗法,成为当前肾移植领域的研究重点。国际方面,Cynata Therapeutics与莱顿大学医学中心(LUMC)合作,开展名为“NEREID研究”的I/II期临床试验,评估其Cymerus™平台iMSC产品CYP-001在肾移植患者中的安全性与有效性。首例患者的治疗于 2024 年 12 月完成,预计首批受试者的试验结果将于 2025 年上半年得出。

缺血性心肌病


心肌纤维化面积定量分析

心肌边缘区毛细血管生成定量分析

在大鼠模型中,静脉注射iPSC来源的MSC可在心脏损伤区域聚集,促进血管生成、抑制纤维化,从而改善心功能。研究还发现,其分泌的细胞外囊泡(EVs)及miRNA通过旁分泌机制在治疗中发挥重要作用。这表明了使用该方法治疗慢性心力衰竭在临床上的可能性。

…………



iMSC的新方向 

 疾病建模与药物筛选

在再生医学领域,iMSC 展现出了巨大的潜力,通过分化为特定细胞、分泌生物活性分子和调节免疫微环境,在组织修复与再生中发挥关键作用。而 iMSC 的价值不止于此,在疾病建模与药物筛选领域,iMSC 技术带来了新机遇。iMSC 与人体组织相似、获取方便且能分化多种细胞,是研究疾病机制、筛选药物的有力工具。


 在疾病模型研究中,iMSC 可促进组织修复和调节免疫。如在牙周炎、炎症性肠病等模型中,iMSC 分别促进牙周再生、增强黏膜愈合;在动脉粥样硬化模型中,它能抑制免疫、减轻炎症。同时,iMSC 还能通过旁分泌或线粒体转移来恢复细胞功能,像在视网膜疾病和哮喘炎症模型中,分别提升视网膜神经节细胞存活率、改善上皮细胞线粒体功能。


 在药物筛选方面,基于 iMSC 的疾病模型能精准模拟疾病表型。以进行性骨化性纤维发育不良(FOP)研究为例,利用 FOP-iMSC 发现了 mTOR 信号通路在疾病中的关键作用,还筛选出雷帕霉素等潜在治疗药物。此外,在 Hutchinson-Gilford 早衰综合征研究中,也借助 iMSC 深入了解病理并筛选出可降低早老素表达的化合物,为疾病治疗带来新希望。

iMSC作为诱导多能干细胞技术在再生医学中的重要转化产物,具备原代MSC无法比拟的标准化、规模化、安全性与可塑性优势。

随着产业界与科研界的共同努力,我们有理由相信——“iMSC将成为细胞治疗领域的下一个关键突破口,助力再生医学走向更安全、更精准、更普惠的未来。”

参考文献:

  1. Kawasumi, Ryo et al. “Systemic administration of induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells improves cardiac function through extracellular vesicle-mediated tissue repair in a rat model of ischemic cardiomyopathy.” Regenerative therapy vol. 28 253-261. 31 Dec. 2024, doi:10.1016/j.reth.2024.12.008

  2. Fu, Siyi et al. “Pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells for therapeutic applications, developmental study, and cancer research.” Current opinion in genetics & development, vol. 92 102327. 6 Mar. 2025, doi:10.1016/j.gde.2025.102327

  3. Choudhery, Mahmood S et al. “Induced Mesenchymal Stem Cells: An Emerging Source for Regenerative Medicine Applications.” Journal of clinical medicine vol. 14,6 2053. 18 Mar. 2025, doi:10.3390/jcm14062053

  4. Liu, L.; Wu, Y.; Wang, P.; Shi, M.; Wang, J.; Ma, H.; Sun, D. PSC-MSC-derived exosomes protect against kidney ffbrosis in vivo and in vitro through the SIRT6/β-catenin signaling pathway. Int. J. Stem Cells 2021, 14, 310–319. 

  5. 48. Sheu, J.J.; Sung, P.H.; Wallace, C.G.; Yang, C.C.; Chen, K.H.; Shao, P.L.; Chu, Y.C.; Huang, C.R.; Chen, Y.L.; Ko, S.F. Intravenous administration of iPS-MSCSPIONs mobilized into CKD parenchyma and effectively preserved residual renal function in CKD rat.J. Cell. Mol. Med. 2020, 24, 3593–3610. 

  6. Ko, S.-F.; Chen, Y.-T.; Wallace, C.G.; Chen, K.-H.; Sung, P.-H.; Cheng, B.-C.; Huang, T.-H.; Chen, Y.-L.; Li, Y.-C.; Chang, H.-W.Inducible pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cell therapy effectively protected kidney from acute ischemiareperfusion injury. Am. J. Transl. Res. 2018, 10, 3053.




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